-
Пройти Антиплагиат ©



Главная » Рефераты » Текст работы «Сальмонелла»


Сальмонелла

ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1  ХАРАКТЕРИСТИКА РОДА САЛЬМОНЕЛЛА
1.1 История открытия Сальмонеллы
1.2 Научная классификация Сальмонеллы
1.3 Устойчивость Сальмонеллы
1.4 Патогенность Сальмонеллы
ГЛАВА 2 МОРФОЛОГИЯ САЛЬМОНЕЛЛЫ
2.1 Форма, размер, подвижность, споры, капсулы
2.2 Методы окраски
ГЛАВА 3. КУЛЬТУРАЛЬНЫЕ СВОЙСТВА
3.1 Оптимальные условия роста и развития
ГЛАВА 4 АНТИГЕННАЯ СТРУКТУРА И ФАКТОРЫ ПАТОГЕННОСТИ
4.1 Антигенная структура
4.2 Факторы патогенности
ГЛАВА 5 ПАТОГЕНЕЗ И КЛИНИКА
5.1 Возбудители брюшного тифа и паратифов
5.2 Возбудители сальмонеллезов
ГЛАВА 6 ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА
6.1 Исследования на брюшной тиф и паратиф
6.1.1 Бактериологическое исследование
6.1.2 Серологическое исследование
6.1.3 Исследование воды
6.2 Исследования на сальмонеллез
6.2.1 Бактериологическое исследование
6.2.2 Биологическое исследование
6.2.3 Серологическое исследование
ГЛАВА 7 ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ К АНТИБИОТИКАМ И  ДЕЗРАСТВОРАМ
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ
ПРИЛОЖЕНИЕ.

Дисциплина: Биология, естествознание, КСЕ
Вид работы: курсовая работа
Язык: русский
Дата добавления: 28.02.2016
Размер файла: 170 Kb
Просмотров: 20397
Загрузок: 176

Все приложения, графические материалы, формулы, таблицы и рисунки работы на тему: Сальмонелла (предмет: Биология, естествознание, КСЕ) находятся в архиве, который можно скачать с нашего сайта.
Приступая к прочтению данного произведения (перемещая полосу прокрутки браузера вниз), Вы соглашаетесь с условиями открытой лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная (CC BY 4.0)
.

ВВЕДЕНИЕ
Рост количества возбудителей бактериальных инфекций человека, многообразие их свойств и неодинаковое медицинское значение требуют углубления знаний о бактериях, участвующих в развитии инфекционных процессов.
К роду Сальмонелла причисляют как  абсолютно безопасные для человека виды, так и весьма патогенные бактерии. Сальмонелла является возбудителями инфекционных болезней, объединенных под общим названием – сальмонеллезы. Заболеваемость сальмонеллезами повсеместно имеет тенденцию к росту, особенно это касается крупных городов с централизованной системой продовольственного снабжения. В Беларуси среди бактериальных кишечных инфекций сальмонеллёзы имеют самые высокие показатели заболеваемости (45,38 на 100000 в 2009 г.).
Сальмонеллезы характеризуются поражением органов ЖКТ (желудочно-кишечного тракта), характеризуются сходными симптомами и течением заболевания. Возбудителей брюшного тифа по степени опасности для человека, относят к III категории бактерий, наравне с возбудителями туберкулеза, дифтерии. В эпидемический процесс сальмонеллезов вовлекаются все возрастные группы населения. При этом дети первого года жизни в наибольшей меревосприимчивы к сальмонеллёзу, у них заболевание протекает в более тяжелой форме. Возможны смертельные исходы, для этого необходимо уделять должное внимание профилактике и информированию о данном виде возбудителей.
Проблемой является не только широкое распространение сальмонеллы в окружающей среде, ее адаптируемость, но и нарастающая резистентность к противомикробным препаратам.
Поэтому целью курсовой работы явилось изучение бактерий рода Сальмонелла как возбудителей бактериальных болезней; заболеваний вызываемых организмами этого рода, методов их идентификации и профилактики.
Для достижения поставленной цели, необходимо было решить следующие задачи:
1. Рассмотреть характеристику рода Salmonella.
2. Изучить морфологические свойства рода Salmonella.
3. Выделить основные культуральные свойства бактерий рода Salmonella.
4. Рассмотреть антигенную структуру и факторы патогенности сальмонелл.
5. Ознакомиться с основными заболеваниями, вызываемыми бактериями этого рода.
6. Раскрыть суть основных методов лабораторной диагностики для выявления сальмонелл.
7. Рассмотреть чувствительность бактерий рода Salmonella к антибиотикам и дезрастворам.
 
ГЛАВА 1

Характеристика рода Сальмонелла

 
1.1 История открытия Сальмонеллы
 
Род Сальмонелла назван в честь ученого, американского ветеринарного врача Дэниэла Сэлмона (рисунок 1), выделившего совместно с бактериологом Теобальдом Смитом (рисунок 2) одного из представителей рода во время эпидемии холеры свиней 1885 года, известного как возбудитель пищевой токсикоинфекции Salmonella choleraesuis [10, 20]. Это родовое название было принято международным соглашением на основе приоритета в соответствии с  интернациональными правилами номенклатуры 1933г. [21].
Рисунок 1 – Американский ветеринарный врач Даниэл Сэлмон
Рисунок 2 – Бактериолог Теобальд Смит
Первым, кто обосновал бактериальную этиологию сальмонеллезов, был Gartner , выделивший во время вспышки энтеритов во Франкенхаузене из мяса вынужденно убитой коровы и селезенки умершего человека идентичные бактерии, названные им «Bacillus  enteritidis» и именуемые ныне Salmonella enteritidis [20].
В 1898г. Исаченко в СССР, а в 1900 г. Danysz во Франции выделили родственный Salmonella enteritidis, возбудитель эпизоотий крыс - Salmonella enteritidis var. danysz  или  Salmonella enteritidis var. ratin, использовавшийся впоследствии как средство истребления этих животных [21].
В 1880г. Eberth открыл возбудителей брюшного тифа при микроскопическом исследовании срезов селезенки и других внутренних органов людей, умерших от брюшного тифа и назвал их «Typhysbacillen». В 1884 г ученик Роберта  Коха, Gaffky впервые сообщил о выделении S. typhi в чистой культуре из селезенки умершего от брюшного тифа во время эпидемии этой инфекции в Виттенбергере в 1882 г. [20].
Первое сообщение о S. typhimurium было сделано в 1892 г.Loffler, выделившим этот микроорганизм у павших белых мышей. Впоследствии этот микроорганизм был выделен многими исследователями [21].
В 1896г. Achard, Bensode, Schottmuller выделили возбудителя паратифа В, в 1898г.  Gwyn открыл, а Kayser описал возбудителя паратифа А. Возбудитель паратифа С впервые был выделен в Турции во время войны 1914-1918гг. Neukirch [20].
C каждым годом количество выявленных представителей рода Сальмонелла увеличивалось. Так, в период с 1881 по 1914 их насчитывалось 12, а в следующие 13 лет прибавилось еще 12. Первая схема Кауфмана – Уайта 1934г. насчитывала уже 44 представителя. Особенно быстро их число нарастало после 2-ой мировой войны, сейчас их насчитывается около 2500 [21]. 
Официальной спецификации для выбора названия сальмонелл не существует. Каждый, кто открывал новый вид давал ему название по собственному усмотрению, в результате чего, названия сальмонелл имеют самое разнообразное происхождение [10]. 
Первые выделявшиеся серовары сальмонелл получали, как правило, названия болезни, которую они вызывали у человека (S typhi, S. paratyphi A, S. paratyphi B, S. paratyphi C, S. enteritidis) или у животных (S. abortus-bovis, S. abortus-ovis, S abortus-equi, S. cholerae-suis, S. typhimurium, S. typhi-suis) [20].
Многие из сероваров получали название страны (S. brasil, S canada, S. congo), города (S. aberdeen, S. hamburg) в которых они были выделены, или улицы, на которой располагался институт, где был идентифицирован штамм (S. kuessei, S. sterrenbos) [21].
Отдельные серовары получили зоологическое название животного, у которого они были обнаружены (S. cairina) или материала, из которого они были выделены (S. aqua, S. carno). В ряде случаев вновь выделявшимся штаммам присваивали названия рек (S. humber, S. mendosa), гор и долин (S. carmel, S. emek) [21].
К сказанному уместно добавить, что число представителей рода сальмонелла продолжает постоянно пополняться и ежегодно в среднем прибавляется около 50 новых сероваров [20].
 

1.2 Научная классификация Сальмонелл

В каталоге «Определитель бактерий-9» (1984-1989) прокариоты в зависимости от строения клеточной стенки разделены на 17 частей. Бактерии рода Сальмонелла  в составе семейства Enterobacteriaceae, относятся к Части 5 – факультативно-анаэробные грамотрицательные палочки, Отделу I – Gracilicutes, объединяющим бактерий с тонкой клеточной стенкой. В 1993 г. в определитель Берджи были внесены новые изменения, каждый отдел был разделен на группы. В соответствии с этими изменениями бактерии рода Salmonella продолжали входить в Отдел I – Gracilicutes,  включены в 5 группу - факультативно-анаэробные грамотрицательные палочки, подгруппа 1 - семейство  Enterobacteriaceae [6].
В 2001 г. классификация бактерий Берджи вновь претерпела большие изменения. Первые 3 отдела (Gracilicutes, Firmicutes и Tenericutes) были объединены в новую неформальную группу - домен эубактерий (Bacteria), а 4-й отдел (Mendosicutes) выделен как самостоятельный домен архебактерий (Archaea). Домен эубактерий поделен на 24 типа (филума), которые разделены на 33 класса. В соответствии с новой классификацией бактерии рода Сальмонелла относятся к домену Bacteria, филуму В12 – Proteobacteria, классу III – Gamma  Proteobacteria, порядку 12 – Enterobacteriales, семейству – Enterobacteriaceae, роду – Сальмонелла  [6, 8].
Научная классификация бактерий рода Сальмонелла выглядит следующим образом: царство: Procariotaе, подцарство (домен): Bacteria,           отдел: Gracilicutes, тип: Proteobacteria, класс: Gamma Proteobacteria, порядок: Enterobacteries, семейство: Enterobacteriaceae, род: Salmonella [5].                           
С тех пор как сальмонеллы были объединены в самостоятельный род, их классификация и номенклатура неоднократно подвергались пересмотру и изменениям при всём этом наибольшую дискуссию вызывал вопрос о том, рассматривать ли входящих в род Salmonella представителей, как виды или типы. В различных классификациях внутри рода Сальмонелла различали от одного до нескольких тысяч видов. Систематика 1972г. по Берджи включала  11 видов: S. choleraesuis, S. hirschfeldii (S. paratyphi C), S. typhi, S. paratyphi A, S. schottmuelleri (S. paratyphi B), S. typhimurium, S. enteritidis, S. gallinarum, S. salamae, S. arizonae, S. boutenae [14].
Наиболее употребимая классификация, основанная на строении ДНК, включает только 2 вида - S. bongori и S. enterica. Причем S. bongori для человека непатогенен. Вид  S.enterica включает 6 подвидов (choleraesuis, salamae, arizonae, diarizonae, houtenae и indica), в каждом из которых множество серотипов [10]. 
 
Таблица 1. – Систематика в наибольшей мерераспространенных патогенных для человека бактерий рода Salmonella
Вид Подвид Серогруппа Самые распространенные серотипы
Salmonella enterica (I)choleraesuis A paratyphi A
    B typhimurium, agona, derby, heidelberg, paratyphi  B
    C choleraesuis, infantis,virchow
    D dublin, enteritidis, typhi
    E anatum
  (II) salamae    
  (IIIa) arizonae    
  (IIIb) diarizonae    
  (IV) houtenae    
  (VI) indica    
Salmonellabongori    
 
В настоящее время количество серотипов сальмонелл достигло более 2500. Большинство патогенных для человека сальмонелл принадлежит к виду S. enterica  (таблица 1) [10].
 
 
1.3. Устойчивость Сальмонеллы
 
Сальмонеллы обладают высокой устойчивостью к факторам внешней среды и длительно сохраняются в природе. Температурный оптимум равен 35-37°С, оптимум рН – 7,2˗7,4. Рост сальмонелл подавляют высокие концентрации хлорида натрия и сахара [20]. В воде открытых водоемов и питьевой воде они могут выживать 11˗120 суток [2], a А.В. Воробьев приводит сведения: в холодной чистой воде могут сохраняться до полутора лет [4]; в морской воде – 15˗30, на овощах и фруктах – 5˗10 суток, на замороженных овощах и фруктах – 0,5˗2,5 месяца, в масле, сыре – до 3 месяцев, в яйцах и замороженном мясе – до 13 месяцев, в колбасных изделиях – 60˗130 суток, в яичном порошке до 9 месяцев, в почве  до 9 месяцев, в комнатной пыли – 80˗540 суток. Нагревание при температуре 70°С сальмонеллы выдерживают в течение 30 минут [10], кипячение при 100°С убивает их мгновенно, но присутствие в воде белковых веществ увеличивает термоустойчивость сальмонелл.  Oчень чувствительны к дезинфицирующим веществам, УФ-лучам. В пищевых продуктах (мясе, молоке и др.) сальмонеллы могут не только долго сохраняться, но и размножаться [4, 20]. Сальмонеллы резистентны к замораживанию и к некоторым химическим веществам (бриллиантовому зеленому, дезоксихолату), которые угнетают рост колиформных бактерий и могут быть использованы для выделения сальмонелл из фекалий [22].
 
 
1.4 Патогенность бактерий Сальмонеллы
 
Вопрос о разграничении бактерий рода Сальмонелла на монопатогенные для человека и для животных и бипатогенные до настоящего времени еще изучен недостаточно.
В процессе эволюции сальмонеллы приспособились к существованию в организме того или иного хозяина. При этом эта избирательная способность не определяет абсолютной монопатогенности данного возбудителя в отношении естественного хозяина [14].
Резкое деление бактерий рода Сальмонелла на патогенных только для человека или только для животных следует считать необоснованным. Так, S. cholerae suis, которую раньше считали патогенной только для свиней, может вызывать заболевание как различных животных, так и человека. В этиологии сальмонеллезов у людей значительную роль играет S. pullorum, которую долгое время не считали патогенной для человека. S. paratyphi В до недавнего времени считали патогенной только для человека [15].
В настоящее время установлено, что люди могут быть бактерионосителями и бактериовыделителями различных серологических типов сальмонелл вследствие перенесенного заболевания или употребления в пищу зараженных сальмонеллами продуктов. Кроме того сальмонеллоносительство у человека возможно в результате контакта с больными людьми и животными, а также с обсемененными продуктами.
Эпидемиологическая опасность сальмонелловыделения у людей связана с распространением инфекции среди населения через инфицированные пищевые продукты и возникновением вторичных форм сальмонеллезов, наслаивающихся на первичные патологические процессы [11].
 
ГЛАВА 2

Морфология Сальмонеллы

 
2.1 Форма, размер, подвижность, споры, капсулы
 
Ключевые признаки рода Salmonella следующие: короткие прямые
палочки с закругленными концами (0,7˗1,5х2˗5мкм), в большинстве
случаев подвижны за счет множества жгутиков (рисунок 3), распределённых по всей поверхности – перитрихии [20]. 
 
Клетка Сальмонеллы
Рисунок 3 – Клетка Salmonella typhimurium в состоянии покоя (А), и при движении (Б).
*Стрелками показано направление вращения и движения клетки
 
Спор и капсул не имеют за двумя исключениями Salmonella typhi и  Salmonella paratyphi С имеют капсульный полисахарид Vi [8]. Все они факультативные анаэробы, не ферментирующие лактозу (кроме S. arizonae и S. diarizonae), и сахарозу, но разлагают глюкозу, мальтозу, маннит и декстрин [21, 22].
 
 
2.2 Методы окраски
 
При жизни – кал, сыворотка крови, посмертно – трупы мелких животных и птиц, паренхиматозные органы, сальмонеллы выявляются при окраске по Граму: они грамотрицательные. При этом более ярко сальмонеллы окрашиваются анилиновыми красителями – синькой Леффлера и другие. Под микроскопом эти бактерии выглядят как короткие палочки с закругленными концами. Размеры их в среднем составляют 1˗3 мкм (0,001-0,003 миллиметра). Благодаря наличию жгутиков, все они весьма подвижны и в своем микроскопическом мире двигаются достаточно резво, проплывая за секунду расстояние, в 10 раз превышающее длину собственного тела. [9].
Окраска сальмонелл по Граму.
Красящие растворы.
Раствор кристаллического фиолетового по Эрлиху: 1,2 г кристаллического фиолетового растворяют в 12 мл 96 % спирта и добавляют 100 мл свежеприготовленной анилиновой воды, полученной при смешивании 2 мл анилина со 100 мл воды. Эта красящая смесь может храниться 2 недели. Вместо кристаллического фиолетового можно использовать метиловый фиолетовый [4].
Красящие смеси для грамотрицательных бактерий:
1) 8˗9 г основного фуксина + 100 мл 96 % спирта;
2) 1 мл насыщенного спиртового раствора основного фуксина + 10 мл дистиллированной воды;
3) 1 г основного фуксина +1 г фенола + 0,5 мл глицерина + 10 мл 96 % спирта +100 мл дистиллированной воды;
4) 0,2˗ 0,5 % водный раствор сафранина либо 0,25 % раствор сафранина в 10 % спирте.
 Методика окраски.
1. Мазки крови, цереброспинальной жидкости, экссудатов фиксируют над пламенем горелки (быстро проводят 3 раза над пламенем, так чтобы мазок прогревался до 70˗800°С в течение 3˗4 с), затем высушивают. Кроме фиксации над огнем, для мазков применима фиксация в метиловом спирте (5 мин) или в парах формалина (в сосуде Коплина) в течение 15 мин.
2. Наливают на фиксированный мазок карболовый или анилиновый генциановый фиолетовый (или кристаллический фиолетовый) на 2˗3  минуты. Во избежание осадков окрашивают через фильтровальную бумагу. Очень удобно работать с полосками фильтровальной бумаги, предварительно пропитанной 1% спиртовым раствором одного из вышеуказанных красителей и затем высушенной. Такую окрашенную и высушенную бумагу накладывают на мазок и смачивают дистиллированной водой. Продолжительность окрашивания остается прежней (2˗3 мин.).
3. Сливают краску, аккуратно удаляют фильтровальную бумагу и быстро споласкивают в водопроводной воде (15˗30 секунд).
4. Мазок заливают на 1˗2 мин раствором Люголя иди другим йодистым раствором, например по Граму (2 г йодида калия растворяют в 2˗3 мл дистиллированной воды, добавляют 1 г кристаллического йода, доливают до 300 мл, а по Вейгерту до 100 мл дистиллированной воды).
5. Раствор сливают, мазок промывают водой (водопроводной или дистилированной).
6. Дифференцируют 96% спиртом, наливая и сливая его, пока отходит синяя краска и не обесцветится мазок (приблизительно 20˗40˗60 секунд). Во время дифференцировки препарат все время покачивают. Если вместо спирта использовать ацетон, то промывание продолжается 30 секунд Можно дифференцировать смесью спирта и ацетона (1:1) 30 с.
7. Промывают стекла в проточной или дистиллированной воде 1-2 мин.
8. Дополнительно окрашивают (для выявления грамотрицательной группы бактерий) либо 0,5% водным раствором нейтрального красного (нейтральрот), либо разведенным (в 10 раз) карболфуксином. Возможна докраска сафранином (0,2˗0,5 % водный раствор или 0,25 % раствор в 10 % спирте) основным коричневым (бисмаркбраун) либо пиронином J или В.
9. Промывают в проточной воде 5 с и высушивают фильтровальной бумагой.
Результат: Грамположительные бактерии окрашиваются в иссиня-черный (темно-синий) цвет, грамотрицательные  – в красный или коричневый в зависимости от красителя; ядра клеток – ярко-красные, цитоплазма – розовая [4, 5, 7].
Следует заметить, что в классической прописи при окраске по Граму обычно не промывают мазки в воде ни после окраски генциановым фиолето-вым (кристаллическим фиолетовым), ни после обработки раствором Люголя, ограничиваются лишь сливанием растворов. Предлагаемое промывание в воде имеет целью только чистоту в работе, тем более, что оно ни в какой мере не отражается на результатах окрашивания [9].
 
 
ГЛАВА 3
КУЛЬТУРАЛЬНЫЕ СВОЙСТВА БАКТЕРИИ САЛЬМОНЕЛЛЫ
 
3.1 Оптимальные условия роста и развития
 
Сальмонеллы – факультативные анаэробы. Они неприхотливы и растут без всяких особенностей на простых питательных средах при температуре 37°С и рН среды 7,2˗7,4, не требуя специальных ростовых факторов. Элективной средой является, например, желчный бульон. При диагностике брюшного тифа, как и других кишечных инфекций, используют дифференциально-диагностические среды: Эндо, Левина, висмут-сульфитный агар [4].
На питательных средах сальмонеллы образуют типичные для большинства энтеробактерий небольшие  (2˗4 мм) прозрачные нежные, голубоватые S-колонии. Некоторые серовары (S. abertus-equi, S. typhi-suis, S. abortus-ovis) образуют более мелкие колонии диаметром около 1 мм. Также они формируют шероховатые и сухие R-колонии. На плотных питательных средах R-колонии неправильной формы с волнообразными, кружевными краями и уплотнённым центром, тусклые и более сухие. На агаре Эндо S-колонии розоватые и прозрачные, на агаре Плоскирева – бесцветные и выглядят более плотными и мутноватыми, на висмут-сульфитном агаре – черно-коричневые, с металлическим блеском, окружены чёрным «гало», среда под колониями окрашивается в чёрный цвет. Исключение составляют S. paratyphi A, S. choleraesuis и некоторые другие, образующие на висмут-сульфитном агаре коричнево-зеленоватые колонии. Следует также отметить, что чашки с посевами на висмут-сульфитном агаре необходимо просматривать через 24 и 48 часов, чем достигается более четкая дифференциация колоний. На среде Левина сальмонеллы растут в виде прозрачных колоний, иногда с фиолетовым оттенком [13, 19, 20].
На мясопептонном агаре через сутки образуют однотипные колонии средней величины, круглые, гладкие, выпуклые, блестящие, бесцветные. В мясопептонном бульоне S-формы растут давая равномерное помутнение R-формы – осадок. Сальмонеллы Шоттмюллера могут вырастать в виде крупных колоний со слизистым валиком по периферии [15, 19, 20].
Характер роста и развития различных патогенных видов in vivo происходит практически по одному и тому же сценарию и включает 5 фаз.
Первая фаза: проникновение возбудителя в организм через рот, прикрепление его к рецепторам мембран энтероцитов и проникновение внутрь клеток (соответствует инкубационному периоду болезни).
Вторая фаза – первичной локализации: проникновение в лимфатический аппарат тонкого кишечника, сенсибилизация кишечника, размножение в макрофагах; это сопровождается гибелью микроорганизмов и выделением токсинов, которые попадают в кровь и вызывают эндотоксинемию.
Третья фаза – бактериемии: возбудитель прорывает лимфатический барьер и попадает в кровь, распространение по всем паренхиматозным органам (начало болезни).
Четвертая фаза – вторичной локализации: в брюшнотифозных органах возникают брюшнотифозные гранулемы (разгар болезни).
Пятая фаза – выделительно-аллергическая: повторный контакт возбудителя с первичносенсибилизированным лимфатическим аппаратом тонкого кишечника; образуются язвы на слизистой оболочке [15, 16].
В  «пестром» ряду Гисса  S.enterica  серовар Typhi  ферментирует глюкозу, маннит, мальтозу до кислоты, не ферментируют  лактозу и сахарозу, не образуют индол, образует сероводород, на лакмусовом молоке образует кислоту,  желатин не разжижает, утилизирует цитрат [11].   
 
 
ГЛАВА 4
АНТИГЕННАЯ СТРУКТУРА И ФАКТОРЫ ПАТОГЕННОСТИ
 
4.1 Антигенная структура
 
Сальмонеллы имеют сложную антигенную структуру. Она представлена 3 группами антигенов: О-антигены (соматические, более 60 О-групп), Н-антигены (жгутиковые, протеиновой природы) и группа поверхностных К-антигенов (А,В,М) [19]. 
В схеме Кауфмана-Уайта (таблица 1 приложения) серовары обозначены цифрами и буквами, означающими различные антигены. Сальмонеллы с конкретным О-антигеном собраны в одну О-группу и расположены внутри группы в алфавитном порядке по H-антигенам [23].
Н-антигены могут быть представлены 1-й (специфической) фазой и 2-й (неспецифической, групповой) фазой. Некоторые сальмонеллы (S. typhi, S.paratyphi, S.dublin)  могут содержать Vi-антиген, экранирующий микробные клетки от влияния О-агглютинирующих сывороток. По данным Н.С. Морозовой (1982) 44,6% всех выделенных культур брюшного тифа не имеют Vi-антигена. Количество его может варьировать у одного и того же штамма в зависимости от формы его существования. Этот антиген присутствует в штаммах, выделенных в остром периоде болезни и теряется при многократных пересевах [19, 22]. 
 Обозначение антигенной формулы сальмонелл соответствует набору обнаруженных антигенных факторов. Антигенные комплексы не стабильны, они подвержены внезапным вариациям (количественным изменениям). О-вариации чаще характерны для антигенов 01,06 и 012. Их считают результа-том лизогенизаций культуры вследствие инфекции конвертирующим фагом. Описаны вариации и по другим антигенам. Диагностическая схема Кауфмана-Уайта представляет по существу каталог антигенов, имеющих первостепенную диагностическую ценность [23].
 В пределах одного и того же серовара сальмонелл возможны варианты – биохимические, серологические и фаговары. Определение их дает возможность эпидемиологу, имея "метку" выделенной культуры, более точно устанавливать эпидемиологические связи и выявлять источники инфекции. Поэтому целесообразно не заканчивать идентификацию определением серовара, а продолжить изучение культуры для определения вариантов, особенно при работе в эпидемическом очаге. Так, могут встречаться " сероводород +" и "сероводород -" варианты S.paratyphi A, "ксилоза+ и -", " рамноза + и -", "инозит + и -" варианты S.typhimurium [19].
Метод фаготипирования чаще всего используют для определения фаговаров возбудителей тифо-паратифозных заболеваний, используя международные схемы. Большинство авторов отмечает стабильность фаговаров культур, выделенных от лиц, эпидемиологически связанных друг с другом, и указывают на эпидемиологическую ценность определения фаговаров [22].
 
 
4.2 Факторы патогенности
 
Патогенность сальмонелл связана с адгезией, инвазией и токсинообразованием. Первые два фактора контролирует большая плазмида (60 мегадальтон). Эндотоксин связан с О-антигеном и вызывает эффект общего токсикоза и острого гастроэнтерита, вплоть до эндотоксического шока. Экзотоксин имеет белковую природу и по механизму действия сходен с холерогеном, т.е. вызывает электролитную диарею. Представляет интерес способность сальмонелл к внутриклеточному паразитированию, даже в клетках макрофагальной системы. Длительное персистирование сальмонелл в организме некоторые авторы объясняют наличием у таких носителей генетического дефекта [19, 22].
 
ГЛАВА 5
ПАТОГЕНЕЗ И КЛИНИКА
 
5.1 Возбудители брюшного тифа и паратифов
 
Брюшной тиф и паратифы А и В – острые кишечные инфекции, сходные по патогенезу и клиническим проявлениям, характеризующиеся поражением лимфатического аппарата кишечника, выраженной интоксикацией. Их возбудителями являются соответственно Salmonella typhi, Salmonella paratyphi A и Salmonella schottmuelleri [24].
Эпидемиология. Брюшной тиф и паратиф А – антропонозные инфекции; источником заболевания являются больные люди и бактерионосители. Источником паратифа В могут быть также сельскохозяйственные животные. Механизм заражения фекально-оральный. Среди путей передачи преобладает водный, реже встречаются алиментарный и контактно-бытовой пути.
Брюшной тиф и паратифы регистрируются в разных странах мира. Чаще болеют люди в возрасте 15˗30 лет. Наибольшая заболеваемость отмечается летом и осенью [21].
Патогенез. Возбудители попадают в организм через рот, достигают тонкой кишки, где в ее лимфатических образованиях размножаются и затем попадают в кровь (стадия бактериемии). С током крови они разносятся по всему организму, внедряясь в паренхиматозные органы (селезенку, печень, почки, костный мозг). При гибели бактерий освобождается эндотоксин, вызывающий выраженную интоксикацию. Из желчного пузыря, где сальмонеллы могут длительно (даже в течение всей жизни) сохраняться, они вновь попадают в те же лимфатические образования тонкой кишки. В результате повторного поступления сальмонелл может развиться своеобразная аллергическая реакция, проявляющаяся в виде воспаления, а затем некроза лимфатических образований. Сальмонеллы выводятся из организма с мочой и калом [23].
Клиника. Клинически брюшной тиф и паратифы неразличимы. Инкубационный период составляет 12˗14 дней. Болезнь обычно начинается остро: с повышения температуры тела, появления слабости, утомляемости; нарушаются сон и аппетит. Для брюшного тифа характерны помутнение сознания, бред, галлюцинации, сыпь. Очень тяжелыми осложнениями являются прободение стенки кишки, перитонит, кишечное кровотечение, возникающие в результате некроза лимфатических образований тонкой кишки [21].
Иммунитет. Постинфекционный, в основном, гуморальный, напряженный, прочный, длительный (не менее 15˗20 лет), часто пожизненный. Образуются антитела к О-, Н-, Vi- антигенам. После перенесенной болезни иммунитет прочный и продолжительный [21].
Лечение. Лечат больных антибиотиками. Применяют также иммуноантибиотикотерапию. Эффективными препаратами являются: левомитицин,левомитицина сукцинат натрия, бисептол, рифампицин, брюшнотифозные бактериофаги [23]. 
 Профилактика. Профилактика заключается в проведении не только санитарно-гигиенических мероприятий, но и вакцинации в районах с неблагополучной эпидемиологической обстановкой. Применяют брюшнотифозную химическую и брюшнотифозную спиртовую вакцину, обогащенную Vi-антигеном. Для экстренной профилактики используют брюшнотифозный бактериофаг [23, 24]. 
 

5.2 Возбудители сальмонеллезов

Сальмонеллез – острая кишечная инфекция, характеризующаяся преимущественным поражением ЖКТ. Возбудителями являются многочисленные бактерии из рода Сальмонелла (кроме S.typhi, S.paratyphi A, S.schottmuelleri) [21].
Эпидемиология. Основной источник болезни – домашние животные (крупный и мелкий рогатый скот, свиньи и др.) и птицы (куры, утки, гуси и др.). Носителями сальмонелл могут быть и другие представители фауны: мыши, голуби, черепахи, устрицы, тараканы и др. Реже источниками болезни являются люди – больные и бактерионосители. Механизм заражения фе-кально-оральный. Основной путь передачи инфекции пищевой [23].
Факторами передачи могут быть не только мясо животных (S.typhimurium) и птиц, инфицированное при жизни животного или при его обработке, но и яйца птиц (S.enteritidis). Наиболее восприимчивы к болезни люди со сниженным иммунитетом (в том числе грудные дети) и больные, получающие антибиотикотерапию. Болезнь широко распространена на всех континентах. Подъем заболеваемости наблюдается летом [19].
Патогенез. Сальмонеллы проникают в организм через рот, достигают тонкой кишки, где и развивается патологический процесс. Бактерии благодаря факторам адгезии прикрепляются к слизистой оболочке, проникают в ее глубокие слои, где захватываются макрофагами. Происходят размножение и гибель сальмонелл с освобождением эндотоксина. Помимо общей интоксикации, эндотоксин вызывает диарею и нарушение водно-солевого обмена. Находящаяся в нормальном состоянии микрофлора кишечника в значительной мере препятствует накоплению сальмонелл. В некоторых случаях (при снижении иммунитета и высокой вирулентности возбудителя) возможны развитие бактериемии и поражение костей, суставов, мозговых оболочек и других органов [24].
Клиника. Инкубационный период равен 12˗24 ч. Болезнь характеризуется повышением температуры тела, тошнотой, рвотой, поносом, болями в животе. Как правило, продолжительность болезни составляет 7 дней. Но в некоторых случаях наблюдается молниеносная токсическая форма, приводящая к смерти [21].
Иммунитет. Постинфекционный, гуморальный и клеточный, типоспецифический, ненапряженный и недлительный. После перенесённой болезни иммунитет сохранятся менее года [20].
Лечение. Лечение заключается в промывании желудка, диете, введении жидкостей для нормализации водно-солевого обмена. Антибиотики при легких формах болезни не назначают, так как их применение может привести к дисбактериозу и в результате – к более длительному течению болезни. Кроме того, очень велико число антибиотикорезистентных сальмонелл [24].
Профилактика. Профилактика неспецифическая – санитарно-гигиенические мероприятия, заключающиеся, в частности, в правильной кулинарной обработке мяса и яиц [21].
 
 
ГЛАВА 6
ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА
 
6.1 Исследования на брюшной тиф и паратиф
 
Выбор материала и метода микробиологической диагностики этих заболеваний зависит от стадии патогенеза. На первой неделе заболевания возбудитель выделяют из крови (гемокультура), на второй и на третьей неделе – из мочи (уринокультура) и испражнений (копрокультура); возможно исследование костного мозга (выделение миелокультуры), скарификата розеол (розеоло-культура), а также (по показаниям) ликвора, содержимого двенадцатиперстной кишки, секционного материала. Начиная со второй недели заболевания проводят серологическое исследование [21, 22].
 
 
6.1.1Бактериологическое исследование
 
 Выделение и идентификация возбудителя является основным метолом диагностики тифо-паратифозных заболеваний. Материалом для исследования служат: кровь, кал, моча, желчь, отделяемое из скарифицированных розеол, а в отдельных случаях – пунктат костного мозга, спинномозговая жидкость, гной из септических очагов, некротнзированные ткани [24].
Наиболее ранним и надежным методом бактериологической диагностики является выделение возбудителей из крови. Сальмонеллы брюшного тифа и паратифов содержатся в крови в течение всего лихорадочного периода и даже в первые дни нормальной температуры. В ранние сроки от начала заболевания интенсивность бактериемии выше, чем в конце лихорадочного периода, поэтому для проведения исследования в начале болезни необходимо 10 мл крови, а в более поздние сроки – 15˗20 мл [25].
Кровь берут асептически непосредственно у постели больного во время подъема температуры тела и засевают для накопления сальмонелл на 10%-й желчный бульон или среду Рапопорт.
Засеянные флаконы инкубируют при 37°С 18˗24 ч. При размножении сальмонелл в результате расщепления маннита или глюкозы рН среды сдвигается и кислую сторону и она приобретает красный цвет. Появление в поплавке газа свидетельствует о вероятном присутствии паратифозных сальмонелл, так как они расщепляют указанные углеводы до кислоты и газа [21, 23].
На 2-й день исследования материал со среды накопления пересевают на чашки с плотными средами (Плоскирева, Эндо, Мак-Конни) для выделения чистой культуры. На дифференциально-диагностических средах через 18˗24 ч инкубации обнаруживают бесцветные колонии, гак как сальмонеллы не ферментируют лактозу. После учета характера роста на чашках делают пересев на комбинированную полиуглеводную среду.
На 3-й день отмечают изменения комбинированной среды: закисление среды в столбике агара свидетельствует о ферментации глюкозы, сероводород обнаруживают по почернению среды. После проверки чистоты культуру засевают на дифференциальные среды для идентификации и на скошенный агар для серотипирования.
На 4-й день исследования учитывают изменения сред «пестрого» ряда, окончательные результаты реакции агглютинации и выдают ответ. В ходе серотипирования вначале ставят ориентировочную РА (реакция агглютинации) на стекле с поливалентной О-сывороткой, а затем с монорецепгторными О и Н – сыворотками. Пользуясь схемой Кауфмана – Уайта, определяют О-серогруппу и серовар выделенной сальмонеллы. Гемокультура сальмонелл брюшного тифа может не агглютинироваться О-сыворотками ввиду присутствия у нее Н-антигена [23]. 
Для внутривидового типирования (с целью определения источника инфекции и путей передачи) проводят пробу с сальмонеллезными фагами: выделенную культуру засевают газоном на питательный агар в чашке Петри, куда затем наносят по 1 капле типовых фагов, подсушивают и инкубируют при 37°С 18˗20 ч. Наличие лизиса культуры) позволяет определить принадлежность выделенного штамма к определенному фаговару. Совпадение фаговаров у штаммов данного вида свидетельствует об общности их происхождения [25].
Посев крови в среде накопления оставляют на несколько суток в термостате, так как в некоторых случаях размножение возбудителей в желчных средах происходит медленно. Пересевы на скошенный агар, среду Эндо производят на 3 – 4-й, 6-й и 10-й день инкубации. Отрицательный ответ выдают на 11-й день.
Следует отметить, что сальмонеллы иногда выделяют из крови хронических бактерионосителей при резком изменении состояния их иммунореактивности [23]. 
Испражнения для исследования берут в стерильные пробирки или баночки, не содержащие следов дезинфицирующих веществ, в количестве 3˗5 г. Сеют фекалии на среду Плоскирева, висмут-сульфитный агар, среду Эндо в чашках, а также на среды накопления  с последующей 18˗24-часовой инкубацией при 37°С [25].
На 2-й день отмечают появление бесцветных колоний на средах Плоскирева, Эндо, а также черных колоний на висмут сульфит-агаре (сальмонеллы паратифа А не образуют сероводород и поэтому их колонии имеют зеленый цвет).
На 3-й день исследования чистую культуру выделенных бактерий сеют в среды «пестрого» ряда и проводят ориентировочную, а потом развернутую РА. 
На 4-й день от начала исследования учитывают изменения сред «пестрого- ряда, результаты РА и выдают ответ. Таким образом, идентификация копрокультуры не отличается от идентификации гемокультуры [24, 25].
Исследованию на микробоносительство подвергаются переболевшие брюшным тифом и паратифом, а также работники детских учреждений, системы питания и водоснабжения. Перед взятием испражнений им дают выпить натощак 100 мл 30%-го раствора магния или натрия сульфата. Испражнения для исследования собирают не ранее чем через 2˗4 ч после приема слабительного, засевают на селективную среду  и одновременно в среду накопления, из которой после 6-часовой инкубации при 37°С материал пересевают на среду Плоскирева. Дальнейшее исследование проводится так же, как указано выше [26].
 
 
6.1.2 Серологическое исследование 
 
Для серологической диагностики брюшного тифа и паратифов используют развернутую РА (реакцию Видаля). Антитела к возбудителям брюшного тифа, паратифов А и В обнаруживаются в сыворотке крови больных с 8-10-го дня заболевания. Для реакции Видаля берут 2˗3 мл крови из вены. Полученную сыворотку последовательно разводят в 6 параллельных рядах пробирок от 1:100 до 1:1600 и вносят ОН- и О-диагностикумы в пробирки: брюшнотифозный, паратифозный А и паратифозный В. Для контроля антигена каждый диагностикум в той же дозе вносят в 1 мл ИХН, а для контроля сыворотки используют сыворотку в разведении 1:100 без добавления диагностикумов. 
Применение О-диагностикумов позволяет обнаружить О-антитела, которые появляются в крови на второй неделе заболевания и исчезают к его концу. Н-агглютинины, напротив, нарастают к концу заболевания. Диагностический титр антител в реакции Видаля у не иммунизированных составляет 1:100, а при отсутвии типичной клинической картины 1:200.
Поскольку при снижении иммунной реактивности динамика нарастания титров специфических агглютининов может изменяться, отрицательная реакция Видаля не исключает тифо-паратифозное заболевание. Выявление Н-антител не представляет диагностической ценности, так как они обнаруживаются у больных в конце заболевания, а также у переболевших и вакцинированных [25, 26]. 
Более чувствительны и чаще дают положительные результаты другие методы: РНГА (реакция непрямой гемагглютинации) с эритроцитарными групповыми (А, В, С, D, Е) и монорецепторными диагностикумами, а также ИФА (иммуноферментный анализ), которые ставят с парными сыворотками в динамике заболевания. Антитела к О-антигенам выявляют начиная со второй недели болезни, а к Vi-антигенам – в более позднем периоде.
 
 
6.1.3 Исследование воды
 
Возбудители брюшного тифа и паратифов содержатся в воде в небольших количествах, поэтому для их обнаружения применяются методы, позволяющие концентрировать клетки микроорганизмов, например, при помощи мембранных фильтров.
Воду в объеме 2 л и более пропускают через мембранные фильтры. Если вода содержит большое количество взвешенных частиц, затрудняющих фильтрацию, ее предварительно пропускают через нитроцеллюлозный фильтр, который задерживает частицы. Фильтры с осадком погружают в желчный бульон или накладывают их на висмут-сульфитный агар. Через 6˗12 ч инкубации в термостате делают пересев из желчного бульона на среду Плоскирева. Дальнейшее исследование проводится по схеме исследования испражнений. После инкубации посевов в течение 2 суток с висмут-сульфитного агара отбирают подозрительные колонии черного цвета и идентифицируют до вида (серовара) [24, 25].
Исследование воды на присутствие брюшнотифозного (паратифоз-ного) фага обычно применяется в тех случаях, когда обнаружить бактерии не удается. Сточную воду пропускают через бактериальный фильтр. В стерильную чашку Петри вносят 1˗2 мл исследуемого фильтрата, наливают 15˗20 мл охлажденного до 45°С и тщательно перемешивают. После застывания агара сеют секторами культуры сальмонелл брюшного тифа, паратифов А и В Наличие негативных колоний подтверждает присутствие соответствующего фага [26].
 
6.2 Исследования на сальмонеллез
 
Помимо возбудителей тифо-паратифозных заболеваний известно более 400 патогенных для человека сероваров сальмонелл, способных вызывать острые гастроэнтериты, тифоподобные формы заболевания, полу-чившего название сальмонеллез. Лабораторному исследованию подлежат рвотные массы, промывные волы желудка, желчь, моча, спинномозговая жидкость, кровь [14].
Для выявления носителей среди обслуживающего персонала пищевых предприятий, детских учреждении исследуют фекалии после приема слабительного. От трупа берут для исследования содержимое желудка и кишечника, кровь из сердца, кусочки паренхиматозных органов [25].
При пищевом пути заражения обязательно исследуют остатки пиши, продукты, из которых она готовилась, смывы со столов, разделочных досок, с рук обслуживающего персонала и других возможных факторов передачи инфекции [21].
Материал собирают в стерильные банки, пробирки в следующем количестве: кал и рвотные массы – 50˗100 мл; промывные воды – 100˗200 мл; мясо и мясные продукты – несколько кусков весом 500 г; полужидкие и жидкие продукты (сметана, молоко) – 100˗200 мл. Яйца отбирают по пять штук из шести разных мест исследуемой партии, причем в первую очередь те, которые хранились более 7 дней.
Указанные материалы отправляют в лабораторию упакованными и опечатанными. Рвотные массы, остатки пищи и другой материал плотной консистенции перед исследованием растирают в фарфоровых ступках и суспензируют. Поверхность мяса, колбасы, сыра стерилизуют, прикладывая раскаленный металлический шпатель, и вырезают пробы из глубины, затем помешают их в фарфоровую ступку, растирают со стерильным стеклянным песком и суспензируют [22, 23].
 
 
6.2.1 Бактериологическое исследование
 
Исследуемый материал сеют в чашки с висмут-сульфитным агаром и в среды накопления (магниевую, селенитовую), из которых через 6˗10 ч делают пересев на висмут-сульфитный агар. Посевы инкубируют при 37°С, на второй день их изучают, отбирают колонии черного цвета и пересевают на полиуглеводную среду для накопления и первичной идентификации чистой культуры. На 3-й день исследования выделенные чистые культуры для окончательной идентификации сеют в среды «пестрого» ряда и ставят РА с адсорбированными сальмонеллезными сыворотками. Если получен положительный результат с одной из групп сывороток, проводят РА с адсорбированными О-сыворотками, характерными для данной группы  для определения серогруппы и серовара сальмонеллы.
На 4-й день исследования учитывают изменения сред «пестрого» ряда. Возбудители сальмонеллеза так же, как сальмонеллы паратифа В, не ферментируют лактозу и сахарозу, расщепляют глюкозу, маннит и мальтозу с образованием кислоты и газа, не образуют индола и  выделяют сероводород [26].
Культуры сальмонелл чаше всего удается выделить из испражнений больных, несколько реже – из рвотных масс и промывных вод желудка, еще реже – из крови, мочи и желчи. Результаты бактериологического исследования различных биосубстратов имеют неодинаковое диагностическое значение. Выделение сальмонелл из крови, костного мозга, спинномозговой жидкости, рвотных масс и промывных вод желудка является бесспорным подтверждением диагноза. Обнаружение сальмоннелл в кале, моче, желчи может быть связано с бактерионосительством [27].
 
 
6.2.2 Биологическое исследование 
 
Возбудители сальмонеллеза в отличие от сальмонелл паратифа В патогенны для белых мышей. Этот признак используется для их дифференциации. В первый лень исследования наряду с посевом патологического материала и пищевых продуктов производится пероральное заражение белых мышей. Через 1˗2 суток мыши погибают от септицемии. При вскрытии обнаруживают резко увеличенную селезенку, иногда и печень, а посев крови из сердца и материала из внутренних органов позволяет выделить культуры сальмонелл [26].
 
 
6.2.3 Серологическое исследование
 
Для серологической диагностики ставят РНГА с сальмонеллезными поливалентными и групповыми  диагностикумами. Для выявления нарастания титра специфических антител реакции ставят с сыворотками, взятыми с интервалом 7˗10 дней. Диагностическое значение имеет повышение титра антител в четыре и более раз [27].
 
 
ГЛАВА 7
ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ К АНТИБИОТИКАМ И ДЕЗРАСТВОРАМ
 
 
Большинство штаммов сальмонелл устойчивы к действию антибиотиков, и поэтому их используют редко, в основном только в тяжелых случаях: хинолоны и нитрофурановые средства, а также фторхинолоны, цефалоспорины, кишечный противомикробный препарат Рифаксимин (Альфа-Нормикс), который действует только в просвете кишки. Антибиотики используются только по назначению врача, считается, что при типичной гастроинтестинальной форме сальмонеллеза, применение антибиотиков оказывает негативный эффект, поскольку действие противомикробных лекарственных средств тормозит выведение токсинов и сальмонелл, чем только усиливает интоксикацию [26].
 Чувствительность штаммов сальмонелл к антибактериальным препаратам представлена в таблице.
 
Таблица 2. – Чувствительность штаммов сальмонелл к антибактериальным препаратам
Антибиотики Чувствительные
(%)
Умеренно-резистентные
(%)
Резистентные
(%)
Ампициллин 83,3 10,6 6,1
Ампициллин/сульбактам 83,3 10,6 6,1
Амоксициллин/клавулан 90,8 7,7 1,5
Цефотаксим 98,5 0 1,5
Цефтриаксон 97,0 1,5 1,5
Тетрациклин 86,2 1,5 12,3
Ципрофлоксацин 100 0 0
Норфлоксацин 100 0 0
Ко-тримаксозол 93,9 0 6,1
 
Как видно из представленных данных, общий уровень резистентности сальмонелл к ампициллину и ампициллин/сульбактаму составил 16.7% (6,1% штаммов были резистентными, 10,6% ˗ умеренно-резистентными), к амоксициллин/клавулану ˗ 9,8%, к тетрациклину ˗ 13,8%, к ко-тримоксазолу ˗ 6,1%. Высокой активностью обладали цефалоспорины III поколения (цефтриаксон, цефотаксим). К ним были чувствительны 97%˗98% испытанных штаммов.
Наибольшая активность показана для ципрофлоксацина, норфлоксацина (все культуры сальмонелл были чувствительны к данным препаратам) [28, 29].
Сальмонеллы очень чувствительны к дезинфицирующим растворам. Но для уничтожения сальмонелл требуется воздействие дезинфицирующего препарата в течение шестидесяти минут. Осветленный 0,3% раствор хлорной извести убивает сальмонеллы через 1 час. Хлорирование сточных вод снижает их загрязненность сальмонеллами в несколько раз. При кипячении возбудители гибнут сразу [25].
сальмонелла курсовая работа, реферат.
Заражение сальмонеллой может произойти при употреблении в пищу любых недостаточно хорошо обработанных продуктов животного происхождения, таких, как мясо, птица, молоко и молочные продукты, яйца, морепродукты. Также можно заразиться при потреблении овощей и фруктов, на которых остались  следы фекалия зараженных животных.
Необходимо следовать следующим правилам:
1. Мыть руки в течение двадцати секунд теплой водой и мылом до и после того, как прикоснулись к пище, после того, как посетили туалет, поменяли пеленки или играли с домашними животными.
2. Хранить сырое мясо отдельно от других продуктов.
3. Тщательно мыть посуду, приборы и поверхности, на которых лежали продукты питания, после приготовления одного блюда и прежде чем начать готовить другое (особенно если там лежало сырое мясо).
4. При возможности использовать отдельную разделочную доску для сырого мяса, птицы и морепродуктов.
5. Готовить сырую говядину, свинину и баранину так, чтобы его внутренняя температура достигала как минимум 63°С.
6. Внутренняя температура блюд из мясного фарша должна достигать, как минимум 71°С, блюд из мяса птицы – 74°С.
7. Минимальная внутренняя температура для блюд из яиц – 71°С, для блюд из рыбы – 63°С. Ни в коем случае не пить сырые яйца.
8. Тщательно разогревать остатки блюд перед их употреблением [27].
 
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
К бактериям рода Сальмонелла относятся как патогенные так и непатогенные для человека и животных виды. Целью данной работы было рассмотрение видов, являющихся возбудителями бактериальных болезней.  Среди бактериальных болезней, вызываемых сальмонеллами различают брюшной тиф и паратифы, и сальмонеллезы. 
Брюшной тиф  и паратифы протекают в виде острой инфекционной болезни, обусловленной сальмонеллами, характеризуется лихорадкой, симптомами общей интоксикации, бактериемией, увеличением печени и селезенки, энтеритом и своеобразными морфологическими изменениями лимфатического аппарата кишечника. Симптомы и течение брюшного тифа и паратифов сходны, различия лишь в возбудителях и путях передачи. Возбудитель брюшного тифа S. typhi относится патогенным бактериям  III группы опасности, наравне с возбудителями туберкулеза и дизентирии.
Сальмонеллезами называют острые кишечные инфекции, вызываемые различными серотипами бактерий рода Salmonella, характеризуется разнообразными клиническими проявлениями от бессимптомного носительства до тяжелых септических форм. Особо опасна септическая форма сальмонеллеза в сочетании с ВИЧ-инфекцией. В большинстве случаев протекает с преимущественным поражением органов пищеварительного тракта (гастроэнтериты, колиты). Сальмонеллез встречается во всех регионах мира. В настоящее время - это один из в наибольшей мерераспространенных зоонозов в развитых странах. Заболеваемость сальмонеллезами повсеместно имеет тенденцию к росту, особенно это касается крупных городов с централизованной системой продовольственного снабжения.
Источниками инфекции являются в основном домашние животные и птицы, однако определенное значение играет и человек (больной, носитель) как дополнительный источник.
Характер роста и развития различных патогенных видов in vivo происходит практически по одному и тому же сценарию и включает 5 фаз.
Первая фаза: проникновение возбудителя в организм через рот, прикрепление его к рецепторам мембран энтероцитов и проникновение внутрь клеток (соответствует инкубационному периоду болезни).
Вторая фаза – первичной локализации: проникновение в лимфатический аппарат тонкого кишечника, сенсибилизация кишечника, размножение в макрофагах; это сопровождается гибелью микроорганизмов и выделением токсинов, которые попадают в кровь и вызывают эндотоксинемию.
Третья фаза – бактериемии: возбудитель прорывает лимфатический барьер и попадает в кровь, распространение по всем паренхиматозным органам (начало болезни).
Четвертая фаза – вторичной локализации: в брюшнотифозных органах возникают брюшнотифозные гранулемы (разгар болезни).
Пятая фаза – выделительно-аллергическая: повторный контакт возбудителя с первичносенсибилизированным лимфатическим аппаратом тонкого кишечника; образуются язвы на слизистой оболочке [15].
Несоблюдение санитарно-гигиенических норм и несвоевременное лечение данных заболеваний может привести к летальному исходу. Козырем сальмонелл является то, что защитная система организма на них не действует: макрофаги не переваривают их, а наоборот служат благоприятной средой для размножения. Поэтому необходимо уделять должное внимание профилактическим мероприятиям и информированию населения о данном возбудителе и опасности вызываемых им заболеваний [21].
 
 
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ
 
1. Алешукина, А.В. Медицинская микробиология: учеб. пособие для вузов / А.В. Алешукина. – Ростов-на-Дону.: Феникс, 2006. – 192 с.
2. Асонов, Н. Р.  Микробиология: учебник по спец. "Зоотехния" / Н.Р. Асонов. – 2-е изд., перераб. и доп. – М.: Агропромиздательство, 1989. - 349с.
3. Бакулов, И.А. Эпизотология с микробиологией / И.А. Бакулов, Е.Д. Буткин, В.С. Ведерников. – М.: Агропромиздат, 1987. – 420 с.
4. Бессарабов, Б.Ф. Инфекционные болезни животных / Б.Ф. Бессарабов, А.А. Вашутин. – М.: Колос, 2007. – 270с.
5. Билетова, Н.В. Санитарная микробиология / Н.В. Билетова, Р.П. Корнелаева, Л.Г. Кострикина. – М.: Пищевая промышленность, 1980. - 352 с.
6. Богданова, О.Ю. Систематика и классификация микроорганизмов: метод. указания к практическим работам / О.Ю. Богданова. – Мурманск.: МГТУ, 2000. – 80 с.
7. Борисов, Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология / Л.Б. Борисов – М.: Логос, 2002. – 736 с
8. Бочкова, В.В. Сальмонеллез и дисбактериоз у детей в возрасте до одного года: автореф.дис. кандидата мед. наук : 14.00.09 / В.В. Бочкова; НАН Беларуси. – Минск, 1995. – 30 с.
9. Воробьев, А.А. Медицинская и санитарная микробиология: учеб. пособие для студ. высш. мед. учеб. заведений / А.А. Воробьев, Ю.С. Кривошеин, В.П. Широбоков – М.: Издательский центр «Академия», 2003. – 464 с.
10. Голубева, И.В. Энтеробактерии: руководство для врачей / И.В. Голубева, В.А. Килессо, Б.С. Киселева – М.: Медицина, 1985. – 321 с.
11. Гусев, М.В. Микробиология: учебник для студ. биол. спец-й вузов / М.В. Гусев, Л.А. Минеева – М.: Издательский центр «Академия», 2003. – 456 с.
12. Емцев, В.Т. Микробиология: учебник для вузов / В.Т. Емцев, Е.Н. Мишустин – М.: Дрофа, 2008. – 444 с.
13. Карпов, С.П. Бактерийные и вирусные препараты: учеб. пособие / С.П. Карпов, А.А. Триполитова, В.Н. Новикова. – Томск.: ТГУ, 1971. – 308 с.
14. Кисленко, В.Н. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии / В.Н. Кисленко. – М.: Колос, 2005. – 232 с.
15. Колешко, О.И. Микробиология с основами вирусологии / О.И. Колешко, Т.В. Завезенова. – М.: Иркутск, 1999. – 452 с. 
16. Коротяев, А.И. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология: учеб. пособие для мед. вузов / А.И. Коротяев, С.А. Бабичев – СПБ.: СпецЛит, 2008. – 767с. 
17. Лысак, В. В. Микробиология: учеб. пособие / В. В. Лысак – М.: БГУ, 2007. – 426 с.
18. Масимов, Н.А. Инфекционные болезни собак и кошек: учеб. пособие / Н.А. Масимов, С.И. Лебедько. – СПб.: Лань, 2009. – 128 с.
19. Мурадова, Е.О. Микробиология / Е.О. Мурадова, К.В. Ткаченко. – М.: Эксмо, 2009. – 336.
20. Нетрусов, А.И. Микробиология: учеб. пособ. для студ. высш. учеб.заведений / А.И. Нетрусов, И.Б. Котова – М.: Издательский центр «Академия», 2007. – 352 с.
21. Покровский, В.И. Классификация факторов патогенности / В.И. Покровский. – М., 1998. – 244с., с. 
22. Седьмая городская поликлиника [Электронный ресурс] / Профилактика сальмонеллеза. Респ. Беларусь. – Минск, 2005. – Режим доступа: https://www.7gdp.by. – Дата доступа: 18.05.2015. 
23. Сельское хозяйство: проблемы и перспективы: сб. научн. трудов. / Гродненский госуд. аграрн. ун-т, Министерство с.х. и продовольствия РБ; ред. В.К. Пестис, С.А. Тарасенко. – Гродно, 2003. – 243 с.
24. Тимаков, В. Д. Микробиология / В.Д. Тимаков. – М.: Медицина, 1973. – 430 с.
25. Шлегель, Г.  Общая микробиология: Пер. с нем.  /  Г. Шлегель. – М.: Мир, 1987. - 567с., с. 
26. Шленская, Т.В. Санитария и гигиена питания: учеб. пособие / Т.В. Шленская, Е.В. Журавко. – М.: Колос, 2006. – 183 с.
27. Шуба, Г.М. Основы медицинской бактериологии, вирусологии и иммунологии / Г.М. Шуба – М.: Логос, 2003. – 264 с.
 

Заказать работу без рисков и посредников








Хочу скачать данную работу! Нажмите на слово скачать
Чтобы скачать работу бесплатно нужно вступить в нашу группу ВКонтакте. Просто кликните по кнопке ниже. Кстати, в нашей группе мы бесплатно помогаем с написанием учебных работ.

Через несколько секунд после проверки подписки появится ссылка на продолжение загрузки работы.
Сколько стоит заказать работу? Бесплатная оценка
Повысить оригинальность данной работы. Обход Антиплагиата.
Сделать работу самостоятельно с помощью "РЕФ-Мастера" ©
Узнать подробней о Реф-Мастере
РЕФ-Мастер - уникальная программа для самостоятельного написания рефератов, курсовых, контрольных и дипломных работ. При помощи РЕФ-Мастера можно легко и быстро сделать оригинальный реферат, контрольную или курсовую на базе готовой работы - Сальмонелла.
Основные инструменты, используемые профессиональными рефератными агентствами, теперь в распоряжении пользователей реф.рф абсолютно бесплатно!
Как правильно написать введение?
Подробней о нашей инструкции по введению
Секреты идеального введения курсовой работы (а также реферата и диплома) от профессиональных авторов крупнейших рефератных агентств России. Узнайте, как правильно сформулировать актуальность темы работы, определить цели и задачи, указать предмет, объект и методы исследования, а также теоретическую, нормативно-правовую и практическую базу Вашей работы.
Как правильно написать заключение?
Подробней о нашей инструкции по заключению
Секреты идеального заключения дипломной и курсовой работы от профессиональных авторов крупнейших рефератных агентств России. Узнайте, как правильно сформулировать выводы о проделанной работы и составить рекомендации по совершенствованию изучаемого вопроса.
Всё об оформлении списка литературы по ГОСТу Как оформить список литературы по ГОСТу?
Рекомендуем
Учебники по дисциплине: Биология, естествознание, КСЕ







курсовая работа по предмету Биология, естествознание, КСЕ на тему: Сальмонелла - понятие и виды, структура и классификация, 2017, 2018-2019 год.



Заказать реферат (курсовую, диплом или отчёт) без рисков, напрямую у автора.

Похожие работы:

Воспользоваться поиском

Похожие учебники и литература 2019:    Готовые списки литературы по ГОСТ

Концепции современного естествознания
ЕГЭ по биологии - справочник для подготовки
История КСЕ
Микробиология
Философия биологии
Фармацевтическая микробиология
Зоогигиена и ветеринарная санитария
Биология. Учебник
Биология. Учебник, часть 2
Цитология и гистология лекции



Скачать работу: Сальмонелла, 2019 г.

Перейти в список рефератов, курсовых, контрольных и дипломов по
         дисциплине Биология, естествознание, КСЕ